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Technologies de pointe et nouvelles méthodes biologiques 3D pour faire avancer la découverte des médicaments
En savoir plusLogiciel d’analyse d’images IN Carta
Analyse puissante associée à un apprentissage automatique moderne
En savoir plusTests de marquage de cellules
Test multiplexé haut contenu à base d'images et utilisé pour le profilage cytologique
En savoir plusCriblage de clones
Automatisez vos flux de travail de détection d’anticorps et de développement de lignées cellulaires et prouvez la clonalité
Lignées cellulairesMonoclonalité mAbSolutions de mise en conformité GxP
Préserve l’intégrité des données, conformément à la norme FDA 21 CFR Part 11
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Innovation permanente
En sciences de la vie, nos solutions permettent de résoudre les problèmes les plus cruciaux. Vous êtes notre source d’inspiration : ensemble, nous élaborons des technologies scientifiques innovantes qui permettent d’améliorer des vies.
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Nous sommes fiers de la réussite de nos clients. Nous sommes cités plus de 230 000 fois dans diverses publications. Des lecteurs de microplaques aux systèmes d’imagerie en passant par les logiciels, notre vaste gamme de solutions vous aide à partager vos découvertes.
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Applications particulières
Marquage cellulaire
Le marquage cellulaire est un test multiplexé haut contenu à base d'images et utilisé pour le profilage cytologique. Dans un test de marquage de cellules, jusqu’à six colorants fluorescents sont utilisés pour marquer les différents composants de la cellule, notamment le noyau, le réticulum endoplasmique, la mitochondrie, le cytosquelette, l’appareil de Golgi et l’ARN. L’objectif est de « peindre » (marquer) la cellule autant que possible afin de capturer une image représentative de la cellule entière. Le logiciel d’analyse d’images automatisé est utilisé pour extraire des mesures caractéristiques de chaque cellule. Le nombre de mesures uniques est généralement compris entre 100 et 1000 par cellule. Ces mesures incluent généralement l’intensité, la texture, la forme, la taille, ainsi que la proximité d’un objet par rapport à sa structure adjacente, ce qui fournit une indication sur la relation spatiale entre les organites. Ensemble, ces mesures forment le profil phénotypique.
Organoïdes
Les organoïdes sont des micro-tissus multicellulaires en trois dimensions (3D) dérivés de cellules souches et conçus pour imiter fidèlement la structure et la fonctionnalité complexes des organes humains comme le poumon, le foie ou le cerveau. Les organoïdes sont généralement constitués d’une co-culture de cellules qui présentent un ordre supérieur d’auto-assemblage permettant une représentation encore meilleure des interactions et des réponses cellulaires in vivo complexes par rapport aux cultures cellulaires traditionnelles en 2D. Un organoïde peut être défini de trois façons différentes : Il s’agit d’un micro-tissu biologique 3D contenant plusieurs types de cellules. Il représente la complexité, l’organisation et la structure d’un tissu. Il présente la fonctionnalité d’un tissu, au moins pour quelques uns de ses aspects.
Solutions de recherche sur le cancer
Le cancer implique des changements qui permettent aux cellules de se développer et de se diviser de manière anarchique, d’envahir et de détruire les tissus adjacents, et enfin de produire des métastases dans des sites anatomiques éloignés. Les chercheurs qui étudient le cancer ont besoin d’outils leur permettant d’analyser plus facilement les interactions complexes et souvent mal comprises entre les cellules cancéreuses et leur environnement, et leur permettant d’identifier des cibles thérapeutiques. Découvrez nos systèmes d’imagerie haut contenu et notre solution logicielle d’analyse qui facilitent la recherche sur le cancer en utilisant des modèles cellulaires 3D pertinents d’un point de vue biologique, comme les sphéroïdes, les organoïdes et les systèmes « organe sur puce » qui simulent l’environnement in vivo d’une tumeur ou d’un organe.
Solutions de recherche sur le coronavirus SARS-CoV-2 (COVID-19)
Vous soutenir dans vos recherches sur les réponses cellulaires à la COVID-19 et le développement d’un vaccin
Recherche sur le vaccin contre le coronavirus SARS-CoV-2 (COVID-19)
Découvrez comment nos solutions et technologies peuvent vous aider dans vos recherches sur les réponses cellulaires à la COVID-19 et le développement d’un vaccin. Ici, nous abordons les applications courantes utilisées dans la recherche sur les maladies infectieuses, notamment des tests ELISA et Western Blot pour déterminer le titre viral et la neutralisation virale.
Flux de travail de développement d’un vaccin
Les flux de travail du développement d’un vaccin varient selon la plateforme choisie (p. ex., virus inactivé vs. vaccin à ADN) , chacune ayant ses propres avantages.
Imagerie de cellules vivantes
L’imagerie de cellules vivantes est l’étude de la structure et du fonctionnement cellulaires dans des cellules vivantes par microscopie. Elle permet de visualiser et de quantifier des processus cellulaires dynamiques en temps réel. La capacité à étudier la structure, la fonction et l’organisation cellulaires et infra-cellulaires dans des systèmes vivants facilite le développement de tests qui sont biologiquement plus pertinents et qui peuvent mieux prédire la réponse humaine aux nouveaux médicaments candidats. L’imagerie de cellules vivantes englobe un grand nombre de sujets et d’applications biologiques, que ce soit des tests de cinétique à long terme ou le marquage fluorescent de cellules vivantes.
Modèles cellulaires 3D
Le développement de tests cellulaires plus complexes, biologiquement pertinents et prédictifs pour le criblage de composés est l'un des défis majeurs des processus de découverte des médicaments. L’intégration des modèles de test tridimensionnels (3D) est de plus en plus fréquente pour la conduite de la biologie translationnelle. Les modèles cellulaires hautement complexes sont de plus en plus populaires car ils imitent mieux les environnements in vivo et les réponses au traitement médicamenteux. Plus spécifiquement, les cultures cellulaires 3D présentent l’avantage de reproduire fidèlement certains aspects des tissus humains, notamment l’architecture, l’organisation cellulaire, les interactions cellule-cellule et cellule-matrice et les caractéristiques de diffusion les plus pertinentes sur le plan physiologique. L’utilisation des tests cellulaires 3D ajoute de la valeur aux recherches et aux campagnes de criblage, comblant l’écart translationnel entre les cultures cellulaires 2D et les modèles animaux complets. En reproduisant des paramètres importants de l’environnement in vivo, les modèles 3D peuvent fournir un aperçu unique du comportement des cellules souches et du développement des tissus in vitro.
Dosage d’immunoabsorption enzymatique (ELISA)
Le test ELISA (dosage d’immunoabsorption enzymatique) est une méthode utilisée pour détecter de façon quantitative un antigène dans un échantillon. Un antigène est une toxine ou une autre substance étrangère, par exemple, un virus de la grippe ou un contaminant environnemental, qui provoque une réaction de défense par le système immunitaire des vertébrés. La plage des antigènes potentiels est vaste. Par conséquent, les dosages ELISA sont utilisés dans de nombreux domaines de recherche et essais pour détecter et quantifier les antigènes dans un grand nombre d’échantillons. Les lysats cellulaires, les prélèvements de sang, les aliments, et bien plus encore, peuvent être analysés avec des dosages ELISA pour rechercher des substances spécifiques d’intérêt. Il existe quatre principaux types de test ELISA : direct, indirect, compétitif et sandwich. Chaque type est décrit ci-dessous avec un schéma illustrant la façon selon laquelle les analytes et les anticorps sont liés et utilisés. Test ELISA direct Dans un test ELISA direct, l’antigène se fixe au fond du puits de la microplaque, puis il se lie à un anticorps qui lui est spécifique et se conjugue à une enzyme ou à une autre molécule qui permet la détection. Test ELISA indirect Dans un test ELISA indirect, l’antigène se fixe au fond du puits de la microplaque, puis un anticorps spécifique à l’antigène est ajouté. Un anticorps secondaire, conjugué à une enzyme ou à une autre molécule de détection est ensuite lié au premier anticorps. Test ELISA compétitif Dans un test ELISA compétitif, un antigène de référence se fixe au fond des puits de la microplaque. L’échantillon plus l'anticorps sont ajoutés aux puits, et si un antigène est présent dans l’échantillon, il est en compétition avec l’antigène de référence pour se lier à l’anticorps. La substance non liée est éliminée. Plus la quantité d’antigène est importante dans l’échantillon, plus la quantité d’anticorps liée par l’antigène de référence au fond des puits est faible, et plus le signal est faible. Test ELISA de type sandwich Pour le test ELISA de type sandwich, deux anticorps spécifiques à deux épitopes différents sur l’antigène cible sont utilisés. L’anticorps de capture est lié au fond du puits de la microplaque et se fixe à un épitope de l’antigène. L’anticorps de détection se lie à l’antigène à un épitope différent et est conjugué à une enzyme qui permet la détection. (Si l’anticorps de détection n’est pas conjugué, alors un anticorps de détection conjugué à une enzyme secondaire est requis).
Analyse de l’excroissance des neurites
L’analyse de l’excroissance des neurites s'effectue par la segmentation et la quantification des processus neuronaux. Ces processus neuronaux peuvent être évalués par imagerie au moyen d’un microscope à fluorescence et quantifiés par un tracé et un comptage manuels lorsque le débit est faible. Toutefois, pour les échantillons traités par microplaque à un débit plus élevé, un système d’imagerie automatisé associé au logiciel d’analyse constitue une solution plus efficace. Molecular Devices propose différentes options pour les imageurs automatisés afin que les laboratoires puissent sélectionner un système adapté à leurs recherches. Découvrez comment utiliser le logiciel CellReporterXpress pour acquérir et analyser plus efficacement les données sur les cellules neuronales.
GPCR, récepteurs couplés aux protéines G, et canaux ioniques
Les GPCR, récepteurs couplés aux protéines G, constituent la plus grande famille de protéines, comptant entre 600 et 1000 membres, et ont été associés à de nombreux états biologiques normaux ou pathologiques. Ils sont également connus sous le nom de récepteurs à sept domaines transmembranaires (7-TM) et constituent la cible d'environ 45 % des médicaments modernes. Les fonctions des GPCR sont très variées, ils reconnaissent en effet un grand nombre de ligands, notamment des photons, de petites molécules et des protéines. Les canaux ioniques sont des pores dans la membrane cellulaire qui permettent aux ions de pénétrer dans la cellule et d’en sortir. Il existe plus de 400 gènes pour les canaux ioniques dans le génome humain. Nombre d’entre eux ont été ciblés par des médicaments qui sont à présent de grands succès. L’activité des canaux ioniques est directement mesurée avec des appareils d’électrophysiologie traditionnelle pour la méthode patch-clamp. Toutefois, le débit est très faible. L’activité des canaux ioniques peut également être mesurée indirectement, avec un débit beaucoup plus élevé, en utilisant des fluorophores sensibles aux variations du potentiel membranaire, du flux de calcium et du flux de potassium. Solutions pour l’identification de têtes de série précoces contre des GPCR et des cibles canaux ioniques Nous proposons différents tests et instruments destinés à l'étude des fonctions des GPCR et des canaux ioniques, notamment des kits de test, des systèmes d’imagerie et de criblage cellulaire, ainsi que des lecteurs de microplaques.
Recherche sur les cellules souches
Les cellules souches offrent de nouvelles possibilités d’étude dans la recherche de cibles et de voies de signalisation impliquées dans les processus pathologiques. Elles fournissent un modèle plus réaliste d’identification et de confirmation de nouvelles cibles médicamenteuses, produisent des données de pharmacologie et de toxicité de manière plus précoce, et permettent un passage en contexte clinique beaucoup plus facile. Leur utilisation dans le développement de médicaments ouvre également une nouvelle voie à la médecine personnalisée, tout en réduisant, ou même en remplaçant potentiellement, les tests sur les animaux. Les cellules dérivées de cellules souches pluripotentes induites (dérivées d’iPSC) permettent d’étudier les cellules primaires sans les limitations généralement rencontrées lors de l’obtention de ces dernières.
Détection de protéines et d'acides nucléiques
Nos notes d’application démontrent que la quantification des acides nucléiques et des protéines en format microplaque permet un calcul automatisé des résultats et un débit plus élevé par rapport aux autres méthodes.
Numération cellulaire
Pouvoir quantifier avec précision le nombre de cellules dans des microplaques à puits multiple permet d'étudier la santé ou la prolifération cellulaire. Ces applications peuvent utiliser des tests en point final pour l’imagerie de noyaux colorés par fluorescence ou exiger une imagerie à lumière transmise robuste de cellules fixées ou vivantes non colorées. Dans les deux cas, la numération des cellules par segmentation logicielle doit être rapide et fiable. Ici, nous abordons les diverses méthodes et techniques utilisées pour évaluer la prolifération, la cytotoxicité et la confluence en utilisant la numération cellulaire, qui peut être rapidement effectuée par imagerie sur fond clair ou par fluorescence en utilisant un système d’imagerie automatisé et un logiciel d’analyse.
Électrophysiologie patch clamp
La technique d’électrophysiologie moléculaire patch-clamp est un outil d’électrophysiologie polyvalent qui permet de mieux comprendre le fonctionnement des canaux ioniques. Toutes les cellules expriment des canaux ioniques, mais les cellules les plus souvent étudiées avec les techniques patch-clamp incluent les neurones, les fibres musculaires, les cardiomyocytes et les ovocytes surexprimant des canaux ioniques uniques. Pour évaluer la conductance des canaux ioniques uniques, une microélectrode forme un joint de haute résistance avec la membrane cellulaire, puis un morceau de membrane cellulaire contenant le canal ionique d’intérêt est prélevé. Lorsque la microélectrode est scellée à la membrane cellulaire, une technique alternative est de rompre ce petit morceau pour donner à l’électrode un accès électrique à la cellule entière. Une tension est alors appliquée, formant un voltage-clamp, ou blocage de potentiel, et le courant membranaire est mesuré. La technique de current-clamp, ou de courant imposé, peut également être utilisée pour mesurer les changements de potentiel de la membrane. Les changements de potentiel ou de courant dans les membranes cellulaires peuvent être modifiés en administrant des composés capables de bloquer ou d'ouvrir les canaux. Ces techniques permettent aux chercheurs de mieux comprendre le comportement des canaux ioniques en état normal et en état pathologique, et comment différents médicaments, ions ou autres analytes peuvent modifier ces états.
Développement de lignées cellulaires
Les lignées cellulaires stables sont largement utilisées dans de nombreuses applications importantes, notamment la production de molécules biologiques (par ex. protéines recombinantes, anticorps monoclonaux), le criblage de médicaments et les études fonctionnelles de gènes. Le processus de développement de lignées cellulaires stables commence souvent par la transfection de cellules hôtes sélectionnées, en général CHO ou HEK 293, avec les plasmides souhaités. Après la transfection, les chercheurs criblent et quantifient les clones à niveau d'expression élevé. Une fois ces producteurs importants identifiés, les lignées cellulaires et/ou les protéines produites par les cellules sont validées. Les méthodes de criblage manuel traditionnellement utilisées pour le développement de lignées cellulaires sont longues et fastidieuses, augmentant la demande en solutions automatisées à haut débit. Le flux de travail général ci-dessous permet d’identifier les systèmes qui peuvent faciliter vos recherches.
Imagerie et analyse cellulaires
Il existe plusieurs options dans les méthodes d’imagerie cellulaire, allant de la microscopie en contraste de phase qui montre des cellules intactes jusqu'à l’imagerie par fluorescence de molécules ou d’organites uniques. L’analyse cellulaire est réalisée pour évaluer et mesurer l’état actuel des cellules, comme leur intégrité, leur toxicité et leur viabilité. Elle permet également diverses autres applications de recherche. Le recueil de données, leur analyse et leur exportation sous un format utile et pertinent sont des éléments essentiels de l’analyse cellulaire.
L’Université de York utilise des instruments Axon Patch-Clamp pour étudier les rôles des canaux pannexines dans l’épilepsie
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