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Amplificateurs patch-clamp pour tous vos enregistrements, des enregistrements de canaux uniques aux gros enregistrements macroscopiques

 

La série d’amplificateurs Axon Instruments® offre des solutions de pointe pour toute la gamme d'expérimentations patch-clamp Notre offre d’amplificateurs inclut Axopatch™ 200B pour les enregistrements de canaux uniques à faible bruit, MultiClamp™ 700B pour les mesures de courant en potentiel imposé de cellules entières (voltage-clamp) et les mesures de potentiel en courant imposé (current-clamp) à haute vitesse, et Axoclamp™ 900A pour les enregistrements voltage-clamp et current-clamp à deux électrodes.

  • Icône Suppression du bruit

    Minimiser le rapport signal/bruit

    L’amplificateur Axopatch 200B Capacitor Feedback Patch Clamp Amplifier est l'un des instruments disponibles sur le marché qui effectue des enregistrements de canaux uniques ayant le bruit de fond le plus faible, grâce à la technologie à rétroaction de condensateur innovante.

  • Icône Évolutif

    Effectuez des expériences multi-canaux

    L’amplificateur MultiClamp 700B Microelectrode Amplifier permet de réaliser des enregistrements voltage-clamp et current-clamp de cellules entières. Il s’agit de l’amplificateur le plus polyvalent de toute la gamme.

  • Icône Mesurer

    Mesure de courants importants

    La vaste plage de conformité des sorties de notre amplificateur Axoclamp 900A Microelectrode Amplifier facilite la mesure d’enregistrements rapides et volumineux en potentiel imposé et en courant imposé.

Caractéristiques

  • Icône Contrôle de l’environnement

    Refroidissement actif de la tête

    L’amplificateur Axopatch 200B est doté d’une technologie exclusive permettant un refroidissement actif de la tête qui réduit le bruit électrique à un niveau proche des limites théoriques de la physique.

  • Icône Logiciel

    Contrôle logiciel des paramètres

    Les amplificateurs MultiClamp 700B et Axoclamp 900A sont dotés d’un contrôle logiciel. Le contrôle logiciel optimise le paramétrage et permet l’automatisation des paramètres, de la transmission et des protocoles avancés.

  • Icône Enregistrement

    Support allant jusqu'à quatre têtes

    Le MultiClamp 700B peut prendre en charge jusqu’à deux têtes CV-7B principales et deux têtes auxiliaires optionnelles (type HS-2 ou VG-2), ce qui permet l’enregistrement multicanaux lors des études de réseaux cellulaires.

  • Icône Portée

    Vaste gamme de conformité des sorties

    L’amplificateur Axoclamp 900A supporte la mesure de courants plus élevés et garantit une vitesse de clamp plus élevée (± 180 V en modes TEVC et HVIC).

  • Icône Évolutif

    Plusieurs modes de fonctionnement

    L’amplificateur Axoclamp 900A est doté de 5 modes de fonctionnement : current-clamp, current-clamp discontinu, voltage-clamp à deux électrodes, voltage-clamp à électrode unique discontinu, current-clamp haute tension.

  • Icône Données

    Fonctionne avec n’importe quel système d’acquisition de données

    La gamme d’amplificateurs s’intègre à la plupart des programmes d’acquisition de données. Le logiciel pCLAMP™ 11 et le système DigiData® 1550B pour l’acquisition et l’analyse des données vous apportent une performance optimale.

De quel l’amplificateur ai-je besoin ?

  Amplificateur Axopatch 200B Amplificateur MultiClamp 700B Amplificateur Axopatch 900A
Enregistrement de canaux uniques
   
 
 
Voltage-clamp de cellules entières
   
   
 
Current-clamp de cellules entières
 
   
   
Étude bicouche
   
   
 
Enregistrement de potentiels de champ extracellulaire
 
   
   
Étude d’ampérométrie/voltamétrie
  
   
 
Étude des nanopores
   
 
 
Enregistrement à électrode intracellulaire pointue
 
   
   
Enregistrement voltage-clamp à deux électrodes    
   

Dernières ressources

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Applications des amplificateurs Patch-Clamp Axon Instruments

  • Amplificateur de mesure de potentiel en courant imposé

    Amplificateur de mesure de potentiel en courant imposé

    Le current-clamp est une méthode utilisée pour mesurer le potentiel membranaire (tension) résultant d’une injection de courant. Pour mesurer le potentiel membranaire, les amplificateurs MultiClamp 700B et Axoclamp 900A suivent la chute de tension initiée par l’injection de courant le long d’une résistance en série. Le current-clamp est couramment utilisé pour injecter des ondes de courant simulées, mais réalistes, dans une cellule, et pour en suivre l’effet sur la membrane. Cette technique est idéale pour évaluer les événements cellulaires importants tels que les potentiels d’action.

    Électrophysiologie

    Électrophysiologie : Patch Clamp

    L’électrophysiologie est le domaine de la recherche étudiant les variations de courant ou de tension dans une membrane cellulaire. Les techniques d’électrophysiologie sont très utilisées dans diverses applications des neurosciences et de physiologie allant de la compréhension du fonctionnement des canaux ioniques uniques dans une membrane cellulaire aux variations de la cellule entière dans le potentiel membranaire d’une cellule, en passant par les variations à plus grande échelle du potentiel de champ dans les coupes cérébrales in vitro ou les régions cérébrales in vivo.

    En savoir plus  

  • Canaux ioniques

    Canaux ioniques

    Un canal ionique est un groupe de protéines qui forme un pore à travers la bicouche lipidique d'une cellule. Chaque canal est perméable à un ion spécifique tel qu'un ion potassium, sodium, calcium, chlorure. La technique de patch-clamp est utilisée pour évaluer le courant ou la tension dans la membrane associée à l’activité des canaux ioniques grâce à une mesure directe, en temps réel, par des amplificateurs ultrasensibles, des systèmes d’acquisition de données de haute qualité et des logiciels puissants pour évaluer les résultats.

    Patch Clamp

    Techniques d’électrophysiologie patch-clamp

    La technique d’électrophysiologie moléculaire patch-clamp utilise une micropipette en verre en formant un joint de l'ordre du giga-ohm (GΩ) avec la membrane cellulaire. La micropipette contient un fil électrique baignant dans une solution électrolytique pour la conduction des ions. La technique « sur cellule entière » implique la rupture d’un morceau de membrane par une aspiration légère de manière à fournir un accès électrique de faible résistance permettant le contrôle de la tension transmembranaire. Sinon, il est aussi possible de prélever un morceau de membrane sur la cellule et d'évaluer les courants qui passent à travers les canaux uniques au moyen de la technique d’électrophysiologie moléculaire patch-clamp « inside-out » ou « outside-out ».

  • Électrophysiologie Patch-clamp

    Électrophysiologie Patch-clamp

    La méthode patch-clamp est un outil d’électrophysiologie polyvalent qui permet de mieux comprendre le fonctionnement des canaux ioniques. Toutes les cellules expriment des canaux ioniques, mais les cellules les plus souvent étudiées avec les techniques patch-clamp incluent les neurones, les fibres musculaires, les cardiomyocytes et les ovocytes surexprimant des canaux ioniques uniques. Découvrez ici les bases de l’électrophysiologie patch-clamp et des canaux ioniques.

    En savoir plus  

    Compensation de la résistance en série

    Compensation de la résistance en série en utilisant la méthode d’enregistrement sur cellule entière

    La résistance en série est la somme de toutes les résistances entre l’amplificateur et l’intérieur de la cellule calculée en utilisant la méthode d’enregistrement sur cellule entière. En raison de la loi d’Ohm, plus cette résistance est élevée, plus la différence entre le niveau de contrôle et les valeurs mesurées est importante. Cela engendre une erreur de la mesure de potentiel ou de courant, entraînant éventuellement des observations inexactes. Pour éviter cette erreur, les amplificateurs de Molecular Devices sont dotés de circuits intégrés visant à améliorer la bande passante de l’enregistrement en compensant l’erreur introduite par la chute de tension ou de courant à travers des résistances en série.

  • Enregistrement sur canaux uniques

    Technique d’enregistrement patch-clampsur canaux uniques

    La technique d’électrophysiologie moléculaire patch-clamp utilise une micropipette en verre en formant un joint de l'ordre du giga-ohm avec la membrane cellulaire. La micropipette contient un fil électrique baignant dans une solution électrolytique pour la conduction des ions. Pour mesurer les canaux ioniques uniques, un « morceau » (patch) de membrane est prélevé sur la cellule après avoir formé un joint de l'ordre du giga-ohm. Si un canal ionique unique se trouve dans le patch, des courants peuvent être mesurés. L’Axopatch 200B, grâce à son profil à bruit de fond très bas, est idéal pour cette application, optimisant le signal pour les canaux ioniques présentant les plus faibles conductances.

    Amplificateur de mesure de courant en potentiel imposé

    Amplificateur de mesure de courant en potentiel imposé

    Dans une expérience de mesure de courant en potentiel imposé, le potentiel membranaire d'une cellule est contrôlé et le courant transmembranaire requis pour maintenir ce potentiel est mesuré. Ce contrôle du potentiel s’appelle un potentiel de commande. Pour maintenir ce niveau de potentiel de commande, un amplificateur doit injecter du courant. Le courant injecté sera égal et opposé au courant s’échappant des canaux ioniques ouverts, permettant à l’amplificateur de mesurer la quantité de courant passant par les canaux ioniques membranaires ouverts.

  • Enregistrement sur cellule entière

    Technique d’électrophysiologie moléculaire patch-clamp pour l’enregistrement sur cellule entière

    La technique de patch-clamp sur cellule entière utilise une micropipette en verre en formant un joint étanche de l'ordre du gigaohm (GΩ) avec la membrane cellulaire. Cette micropipette contient un fil électrique baignant dans une solution électrolytique pour la conduction des ions. Un morceau de membrane est ensuite rompu avec une aspiration légère de manière à ce que la micropipette en verre fournisse un accès de faible résistance à la cellule entière, vous permettant ainsi de contrôler la tension transmembranaire et d’évaluer la somme de tous les courants passant par les canaux ioniques liés à la membrane.

Caractéristiques et options des amplificateurs Patch-Clamp de chez Axon Instruments

* Niveau de maintien, passage de courant, option de filtre, sorties de signaux multiples, compensation de pipette, compensation de la réactance capacitive de cellules entières rapide, compensation en série, neutralisation de pipette, équilibrage de pont

Ressources sur les amplificateurs Patch-Clamp de chez Axon Instruments

Présentations
Vidéos et webinaires

Une solution complète de flux de travail pour l’électrophysiologie patch-clamp

Pour visionner les derniers webinaires, vidéos et tutoriels sur nos instruments Axon, notamment les amplificateurs Axon Patch-clamp, le numériseur Digidata 1550B plus HumSilencer et la suite logicielle pCLAMP, consultez notre Vidéothèque Axon Patch-Clamp.

Présentation de HumSilencer

Conseils techniques avec Jeffrey Tang : Présentation de Humsilencer

Calculez la constante du temps de descente et réalisez des courbes de régression avec le logiciel Axon pCLAMP

Comment combiner les tracés, calculer la constante du temps de montée ou de décroissance et réaliser l'ajustement des courbes avec le logiciel pCLAMP de chez Axon

Étude mécanique sur la réception et la transmission

Utilisation des études électrophysiologiques pour accélérer l’étude mécanique sur la réception et la transmission

Choix de matériels et de mises à jour pour l’optogénétique

Choix de matériels et de mises à jour pour l’optogénétique en vue de la modélisation de lumière synchronisée

Effets des protéines bêta-amyloïdes sur hSlo1.1, un canal BK, dans un modèle d’ovocyte de xénope

Études sur les effets des protéines bêta-amyloïdes sur hSlo1.1, un canal BK, dans un modèle d’ovocyte de xénope

Outils nanopores-électroniques pour la biophysique de la molécule unique

Outils nanopores-électroniques pour la biophysique de la molécule unique et les bio-nanotechnologies

  • Citation
    Dated: Nov 30, 2020
    Publication Name: Biophysical Journal

    Microsecond Time-Scale Discrimination Among Polycytidylic and Polyuridylic Acid as Homopolymers Within Single RNA Molecules

    Single molecules of DNA or RNA can be detected as they are driven through an α-hemolysin channel by an applied electric field. During translocation, nucleotides within the polynucleotide must pass through the channel pore in sequential, single-file order because the limiting diameter of the pore can accommodate only one strand of DNA or RNA at a… View more

    Single molecules of DNA or RNA can be detected as they are driven through an α-hemolysin channel by an applied electric field. During translocation, nucleotides within the polynucleotide must pass through the channel pore in sequential, single-file order because the limiting diameter of the pore can accommodate only one strand of DNA or RNA at a time. Here we demonstrate that this nanopore behaves as a detector that can rapidly discriminate between pyrimidine and purine segments along an RNA molecule. Nanopore detection and characterization of single molecules represent a new method for directly reading information encoded in linear polymers, and are critical first steps toward direct sequencing of individual DNA and RNA molecules.

    Contributors: Mark Akeson, Daniel Branton, John J.Kasianowicz § EricBrandin, David W.Deamer  
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  • Citation
    Dated: Mar 29, 2006
    Publication Name: Journal of Neuroscience

    Persistent Sodium Current in Layer 5 Neocortical Neurons Is Primarily Generated in the Proximal Axon

    In addition to the well described fast-inactivating component of the Na+ current [transient Na+ current (INaT)], neocortical neurons also exhibit a low-voltage-activated, slowly inactivating “persistent” Na+ current (INaP), which plays a role in determining neuronal excitability and synaptic integration. We investigated the Na+ channels… View more

    In addition to the well described fast-inactivating component of the Na+ current [transient Na+ current (INaT)], neocortical neurons also exhibit a low-voltage-activated, slowly inactivating “persistent” Na+ current (INaP), which plays a role in determining neuronal excitability and synaptic integration. We investigated the Na+ channels responsible for INaP in layer 5 pyramidal cells using cell-attached and whole-cell recordings in neocortical slices. In simultaneous cell-attached and whole-cell somatic recordings, no persistent Na+ channel activity was detected at potentials at which whole-cell INaP operates. Detailed kinetic analysis of late Na+ channel activity in cell-attached patches at 36°C revealed that somatic Na+ channels do not demonstrate “modal gating” behavior and that the probability of single late openings is extremely low (<1.4 × 10−4 or <0.02% of maximal open probability of INaT). Ensemble averages of these currents did not reveal a sustained component whose amplitude and voltage dependence could account for INaP as seen in whole-cell recordings.

    Contributors: Nadav Astman, Michael J. Gutnick and Ilya A. Fleidervish  
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  • Citation
    Dated: Sep 15, 1996
    Publication Name: American Chemical Society

    Microelectrodes for the Measurement of Catecholamines in Biological Systems

    Many of the molecules involved in biological signaling processes are easily oxidized and have been monitored by electrochemical methods. Temporal response, spatial considerations, and sensitivity of the electrodes must be optimized for the specific biological application. To monitor exocytosis from single cells in culture, constant potential… View more

    Many of the molecules involved in biological signaling processes are easily oxidized and have been monitored by electrochemical methods. Temporal response, spatial considerations, and sensitivity of the electrodes must be optimized for the specific biological application. To monitor exocytosis from single cells in culture, constant potential amperometry offers the best temporal resolution, and a low-noise picoammeter improves the detection limits. Smaller electrodes, with 1-μm diameters, provided spatial resolution sufficient to identify the locations of release sites on the surface of single cells. For the study of neurotransmitter release in vivo, larger cylindrical microelectrodes are advantageous because the secreted molecules come from multiple terminals near the electrode, and the greater amounts lead to a larger signal that emerges from the Johnson noise of the current amplifier. With this approach, dopamine release elicited by two electrical stimulus pulses at 10 Hz was detected with fast-scan cyclic voltammetry in vivo. Nafion-coated elliptical electrodes have previously been shown to be incapable of detecting such concentration changes without extensive signal averaging. In addition, we demonstrate that high-pass filtering (200 Hz) of cyclic voltammograms recorded at 300 V/s decreases the background current and digitization noise at these microelectrodes, leading to an improved signal. Also, high-pass filtering discriminated against ascorbic acid, DOPAC, and acidic pH changes, three common interferences in vivo.

    Contributors: Paula S. Cahill, Q. David Walker, Jennifer M. Finnegan, George E. Mickelson, Eric R. Travis, and R. Mark Wightman  
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Amplificateurs Patch-Clamp Axon Instruments

Têtes

Description Détails Numéro de référence de la pièce
Tête HS-9A X0.1U d'Axoclamp 900A Tête x0,1 1-2950-0359
Tête HS-9A X1U d'Axoclamp 900A Tête x1 1-2950-0360
Tête HS-9A X10U d'Axoclamp 900A Tête x10 1-2950-0361
Tête VG-9A X10U d'Axoclamp 900A Tête à masse virtuelle x10 1-2950-0362
Tête VG-9A X100U d'Axoclamp 900A Tête à masse virtuelle x100 1-2950-0363
Tête CV-7B de MultiClamp 700B Tête de patch-clamp 1-CV-7B
Tête CV-7B/BL de MultiClamp 700B Tête bicouche 1-CV-7B/BL
Tête CV-7B/EC de MultiClamp 700B Tête d'électrochimie 1-CV-7B/EC

Supports d'électrode, adaptateurs et composants de supports

Description Détails Numéro de référence de la pièce
Support d'électrode pour tête de type U Compatible avec les pipettes en verre d’un diamètre externe de 1,0 - 1,7 mm 1-HL-U
Capsules de remplacement de support d'électrode Ensemble de 2 capsules de polycarbonate pour les supports HL-U 1-HL-CAP
Laveurs de cône de 1,1 mm de DI Ensemble de 10 rondelles coniques orange pour supports HL-U, compatibles avec les pipettes en verre d’un diamètre externe de 1,0 à 1,1 mm 1-HLC-11
Laveurs de cône de 1,3 mm de DI Ensemble de 10 rondelles coniques orange pour supports HL-U, compatibles avec les pipettes en verre d’un diamètre externe de 1,1 à 1,3 mm 1-HLC-13
Laveurs de cône de 1,5 mm de DI Ensemble de 10 rondelles coniques orange pour supports HL-U, compatibles avec les pipettes en verre d’un diamètre externe de 1,3 à 1,5 mm 1-HLC-15
Laveurs de cône de 1,7 mm de DI Ensemble de 10 rondelles coniques orange pour supports HL-U, compatibles avec les pipettes en verre d’un diamètre externe de 1,5 à 1,7 mm 1-HLC-17
Broches 1 mm pour supports HL-U Ensemble de 3 broches en cuivre pour supports HL-U de 1 mm 1-HLP-U
Prises 2 mm avec coupelles à souder Ensemble de 5 prises en or d'usage général, 2 mm, avec coupelles à souder 1-HLP-0
Fil d’argent Ensemble de 5 fils d’argent, 0,25 mm de diamètre, 50 mm de long 1-HLA-005
Tubulure en silicone pour fil d’argent Tubulure en silicone de 1 mm de DI x 70 mm de long 1-HLT-70
Assemblage de pastilles de chlorure argent/argent Ensemble de 3 assemblages de pastilles Ag/AgCl 1-HLA-003
Adaptateur pour supports BNC à têtes de type U Connecte les supports BNC aux têtes CV et HS avec des pinces de serrage filetées (type U) 1-HLB-U
Adaptateur à angle droit pour supports d'électrode HL-U Ajustement des têtes CV et HS avec des pinces de serrage filetées (type U) 1-HLR-U

Cellules modèles

Description Détails Numéro de référence de la pièce
Cellule modèle pour ovocytes Cellule modèle Axoclamp / GeneClamp pour ovocytes. Connecte aux têtes de séries HS de type U. 1-MCO-2U
Cellule modèle pour TEVC / DSEVC Cellule modèle Axoclamp / GeneClamp pour conditions voltage-clamp à deux électrodes / voltage-clamp à électrode unique discontinu. Connecte aux têtes de séries HS de type U. 1-CLAMP-1U
Cellule modèle pour cellules entières / canaux uniques Cellule modèle Axopatch / GeneClamp / MultiClamp pour conditions de patch-clamp sur canal unique / cellules entières. Connexion aux têtes de séries CV de type U. 1-PATCH-1U
Cellule modèle pour bicouches Cellule modèle Axopatch / GeneClamp / MultiClamp pour conditions de bicouches. Connexion aux têtes de séries CV de type U. 1-MCB-1U

Câbles

Description Détails Numéro de référence de la pièce
Câble pour raccorder les têtes Axoclamp 2 à l'amplificateur Axoclamp 900A Permet l'utilisation de têtes Axoclamp 2 (HS-2, VG-2) sur des amplificateurs Axoclamp 900A 1-2100-0934

Divers

Description Détails Numéro de référence de la pièce
Unité de contrôle de l'amplificateur SoftPanel Fournit un contrôle physique pour les amplificateurs Axoclamp série 900 et MultiClamp série 700 contrôlés par ordinateur. Nécessite une connexion USB. 1-SOFTPANEL (USB)
Sonnerie à distance pour Axoclamp 900A Contrôle portatif de la durée de la sonnerie pour l'amplificateur Axoclamp 900A (1 à 50 ms) 1-2950-0366
Assemblage de pastilles de chlorure argent/argent Ensemble de 3 assemblages de pastilles Ag/AgCl et fil Ag 1-HLA-003